Momordica charantia

Nom scientifique : Momordica charantia L.

Famille : CUCURBITACEAE

Noms vernaculaires

(dans les territoires avec usage significatif TRAMIL)

Haïti:

asorosi

Honduras:

calaica

Barbade:

cerasee

Trinité-et-Tobago:

corailee
popololo
sorrow seed

Porto Rico:

cundeamor

République dominicaine:

cundeamor

Vénézuéla:

cundeamor

Dominique:

kokouli

Antigua-et-Barbuda:

maiden blush

Guatemala:

sorosí

Costa Rica:

sorosí

Autres noms vernaculaires

Haïti:

Asorosi
Asorosi/cundeamor
Asosi
Yesken

Colombie:

Balsamina

Honduras:

Calaica

Barbade:

Cerasee

Trinité-et-Tobago:

Corailee = sorrow seed = popololo

République dominicaine:

Cuandiamor
Cuendeamor
Cundeamor

Cuba:

Cundeamor

Porto Rico:

Cundeamor

Dominique:

Kokouli
Maiden apple cocouli
Maiden's apple o pomme cooli

Antigua-et-Barbuda:

Maiden Blush

Guadeloupe:

Paroka

Belize:

Sorosi

Costa Rica:

Sorosi

Guatemala:

Sorosí

Distribution géographique

Originaire de l’Ancien Monde et naturalisée sous tous les tropiques.

Description botanique

Herbe grimpante pouvant atteindre 6 m, habituellement très ramifiée. Feuilles alternes de 4 à 12 cm, avec 5-7 lobes; lobes obtus ou mucronés, bords dentés ou crénelés. Corolle jaune, segments obtus ou émargés de 1,5 à 2 cm. Fruit ellipsoïdal, tuberculé, déhiscent, de 5 à 15 cm de diamètre, jaune à orangé, avec 3 valves; pulpe de couleur rouge; graines ellipsoïdales, aplaties, de 10 à 16 mm.

Voucher(s)

Faujour,3,BAR
Pimentel,1111,JBSD
García,2329,JBSD
Girón,167,CGEH
Delens,105,VEN
Lagos-Witte,7,HPMHV
Fonrose,52,SOE
Mejía,s/n,MAPR
Delaigue,19,NHTT

cloques sur la peau

feuille et tige, bain et cataplasme^7,14

affections cutanées sèches

parties aériennes, écrasées et/ou en macération aqueuse, bains, friction et application locale^1-10

erythème cutané

feuille et tige, bain et cataplasme^7,13

rhume

rhume : parties aériennes, décoction, voie orale^11-13

pédiculose

parties aériennes, écrasées et/ou en macération aqueuse, bains, friction et application locale^1-10

gratel (éruption cutanée avec ou sans démangeaison)

parties aériennes, écrasées et/ou en macération aqueuse, bains, friction et application locale^1-10

furoncle

parties aériennes, écrasées, bains⁵

Contre les affections cutanées :
Laver soigneusement les parties aériennes de la plante puis les écraser. Appliquer 30 grammes (une poignée) de la matière végétale sur la peau de la zone affectée 3 fois par jour.

Contre le rhume :
Préparer une décoction avec 30 grammes de parties aériennes dans 4 tasses (1 litre) d'eau, faire bouillir pendant 5 minutes dans un récipient couvert. Laisser refroidir, filtrer et boire 1 tasse 3 fois par jour.

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

Selon l’information disponible :

L’emploi contre les furoncles et le rhume est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité et l’information scientifique publiée.

L’emploi contre les affections cutanées sèches de la peau, les démangeaisons et les poux (pédiculose) est classé REC sur la base de l’expérience traditionnelle de l’usage documenté par son emploi significatif dans les enquêtes TRAMIL.

Toute application locale doit se conformer à des strictes mesures d’hygiène, afin d’éviter la contamination ou une infection supplémentaire.

Si l’état du patient se détériore, ou si les furoncles persistent au-delà de 5 jours, consulter un médecin.

Ne pas employer par voie orale avec une femme enceinte car susceptible de provoquer un avortement et/ou un effet tératogène.

Ne pas employer avec des femmes allaitantes, ni avec des enfants de moins de 3 ans.

Travaux TRAMIL^30-31
Le jus lyophilisé obtenu à partir de 500 g de feuille appliqué avec des compresses de gaze stérile sur la peau rasée d’un groupe de 14 lapins albinos mâles New Zealand (2-3 kg) et de 16 cobayes blancs Hantley des deux sexes, avec une observation sur 24 et 72 heures et une analyse histopathologique par biopsie, a montré un indice d’irritation primaire inférieure à 5 (non irritant ni allergisant).

Travail TRAMIL¹⁶
Le produit de la cuisson de la plante entière avec fruit vert mais sans racine, (25 g/kg) par voies orale et intrapéritonéale à la souris, n’a pas entraîné la mort. Le fruit mûr administré oralement à la souris a mis en évidence une DL₅₀ = 3 g/kg.

L'extrait aqueux (décoction) des parties aériennes (2 doses de 25 mL/kg) par voie orale au rat Wistar femelle (150 -200 g), modèle de classe aiguë toxique, n'a provoqué aucun signe de toxicité ni de mortalité en 14 jours d’observation, avec une DL₅₀> 2000 mg/kg³².

L'extrait aqueux de parties aériennes, par voie topique, test d'irritation dermique (0,5 mL) et ophtalmiques (0,1 mL) sur le lapin New Zealand, modèle décrits par l'OEDC 404 et 405, ont été classés comme non-irritant dans les deux cas³².

L’extrait éthanolique (50%) de plante entière (10 g/kg) par voies sous-cutanée et orale à la souris, n’a pas provoqué de manifestations de toxicité générale²⁹.

L’extrait de fruit traité à l’acétone et purifié, contenant le principe actif hypoglycémiant, administré par voie intrapéritonéale à la souris, a révélé des signes de toxicité rénale qui se sont manifestés par une augmentation des niveaux d’urée, sans effets nocifs sur le foie, le coeur ni le sang³³.

L’extrait aqueux (décoction) de feuille (500 mg/kg) par voie orale au rat femelle, n’a pas eu d’effet anti-implantation. A des doses de 200 mg/kg, elle n’a pas produit d’effet abortif ni embryotoxique³⁴.

L'extrait aqueux (décoction) de feuille fraîche (0,10 mg/mL) in vitro a eu une activité génotoxique sur Aspergillus nidulans³⁵.

Le jus du fruit (6 mL/kg/jour) par voie orale à la lapine, a entraîné la mort au bout de 23 jours. Parmi les femelles gravides, ce jus a provoqué 10 morts et 2 cas d’hémorragie utérine³⁶.

L'extrait aqueux de fruit vert (5 kg/300 mL) (2 mL/jour), par voie orale à 24 rates Sprague-Dawley gestantes, aux jours 7 à 14 de la gestation, a provoqué des malformations dans 8,65% de la progéniture des animaux ayant reçu l'extrait contre 1,62% pour le groupe témoin. 31,2% de tous les descendants malformés ont présenté des malformations congénitales multiples³⁷.

L’extrait alcoolique (95%) de fruit (1,75 g/animal/jour) par voie orale au chien mâle a provoqué une diminution dans la formation des spermatozoïdes au bout de 20 jours, avec destruction progressive et totale des vaisseaux spermatiques, destruction d’un grand nombre de différents types de cellules, sauf les cellules de Sertoli et les spermatides basales, ainsi qu’une diminution de la lumière de l’épididyme et des vases déférents au bout de 60 jours d’administration³⁸.

L’extrait alcoolique (95%) de fruit (200 mg/kg/jour/14 jours) par voie orale au gerbille mâle, a induit une réduction significative du poids testiculaire et une interruption de la spermatogénèse, sans affecter les vaisseaux spermatiques, ni la prostate³⁹.

L’extrait éthanolique (95%) de fruit (110 mg/kg/jour/30 jours) par voie orale au gerbille mâle, n’a pas provoqué d’effets de toxicité générale. A une dose de 150 mg/kg/jour, il a entraîné la mort 20 à 30% des animaux avant le 30^ème jour³⁸.

L’extrait aqueux (décoction) de fruit à des doses de 500 mg/personne par voie orale, n’a pas été toxique⁴⁰.

L’extrait aqueux de la plante entière, (15 mL/personne/jour) par voie orale à des femmes enceintes, a inhibé le développement du foetus⁴¹.

Deux composés présents dans la graine (α-trichosanthine, α et la β-momorcharine) auraient un effet abortif^42-43.

On ne dispose d’aucune information pouvant garantir l’innocuité de ce remède administré aux enfants, aux femmes enceintes ou allaitantes.

Travail TRAMIL¹⁵
Sélection phytochimique préliminaire (parties aériennes) :

alcaloïdes :	±
comp. phénoliques :	+
flavonoïdes :	±
quinones :	-
saponosides :	+
stéroïdes, terpénoïdes :	+
tanins :	+

Il existe une grande variation dans la composition chimique selon le lieu de croissance¹⁶.

Analyse proximale pour 100 g de feuille¹⁷: calories : 44; eau : 84,6%; protéines : 5,6%; lipides : 0,6%; glucides : 7%; fibres : 1,6%; cendres : 2,2%; calcium : 288 mg; phosphore : 54 mg; fer : 5 mg; sodium : 19 mg; potassium : 510 mg; carotène : 5085 µg; thiamine : 0,13 mg; riboflavine : 0,45 mg; niacine : 1,50 mg; acide ascorbique : 170 mg.

Constituants chimiques de Momordica charantia :

Partie de la plante	Type de constituant	Nom du constituant
parties aériennes	triterpènes	momordicines I, II et III¹⁸
fruit	aminoacides	alanine, β-alanine, phényl-alanine, acide γ-amino-butyrique, acide glutamique, proline, tryptamine¹⁹polypeptide p²⁰
fruit	stéroïdes glucide	charantine, α-spinastérol, β-sitostérol, stigmastérol et dérivés acide D-galacturonique²¹
fruit vert	saponine	diosgénine²²
	triterpènes	momordicosides E, E-1, EX, F, F',F-1, F-2, G, H, I, J, K, & L²³
péricarpe fruit	caroténoïdes	α, β, γ carotènes et dérivés, lutéine, licopène, rubixanthine, zéaxanthine, zéinoxanthine²⁴

L’extrait aqueux (décoction) de feuille in vitro n’a pas eu d’activité antifongique contre Epidermophyton floccosum, Microsporum canis, Trichophyton mentagrophytes var. algodonosa ni var. granulare²⁵.

L’extrait aqueux de feuille séchée à des concentrations variables a démontré une forte activité insecticide contre Blatella germanica mais pas contre Oncopeltus fasciatus²⁶.

L’extrait méthanolique de feuille séchée (2 mg/mL) a été actif in vitro, contre Corynebacterium diphteriae, Streptobacillus spp., Streptococcus spp. et Staphylococcus aureus²⁷.

L’extrait aqueux de fruit a montré une action marquée face à Bacillus subtilis (CL = 50 mg/disque) et Candida albicans (CL = 25 mg/disque). Les extraits chloroformique, éthéré et méthanolique ont aussi été actifs, mais comparativement avec moins d’efficacité²⁸.

L’extrait hydroalcoolique (50%) de plante entière séche a eu une action antihistaminique faible sur iléon isolé de cobaye (0,01 g/mL)²⁹.

Pharmacopée

Ed.3

References

1 CHARLES C, 1988
TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica.

2 WENIGER B, ROUZIER M, 1986
Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

3 LAGOS-WITTE S, 1988-1995
Encuestas TRAMIL. Laboratorio de Histología Vegetal y Etnobotánica, Departamento de Biología, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras.

4 GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984
Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

5 WENIGER B, 1987-88
Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

6 CASTILLO D, RODRIGUEZ S, DE LOS SANTOS C, BELEN A, 2003
Encuesta TRAMIL (Zambrana, Cotuí). Dep. de Botánica, Jardín Botánico Nacional, Santo Domingo, República Dominicana.

7 CASTILLO D, RODRIGUEZ S, DE LOS SANTOS C, BELEN A, 2003
Encuesta TRAMIL (region Este). Dep. de Botánica, Jardín Botánico Nacional, Santo Domingo, República Dominicana.

8 DELENS M, 1990
Encuesta TRAMIL en Barlovento, Edo. Miranda de Venezuela. Centro al Servicio de la Acción Popular CESAP, Caracas, Venezuela.

9 GIRON L, 1988
Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala.

10 DELAIGUE J, 2005
TRAMIL survey. UAG & PRDI, Tobago House of Assembly, Scarborough, Tobago.

11 O'REILLY A, 1992
TRAMIL survey. Chemistry & Food Technology Division, Ministry of Agriculture, Dunbars, Antigua & Barbuda.

12 OCAMPO R, 1988
Encuesta TRAMIL (Costa atlántica), Instituto de Desarrollo Agrario, Universidad de Costa Rica, San José, Costa Rica.

13 FAUJOUR A, MURREY D, CHELTENHAM-CORBIN B, CARRINGTON S, 2003
TRAMIL survey. IICA & UAG, Saint Thomas, Barbados.

14 BENEDETTI MD, 1994
Encuesta TRAMIL. Universidad de Puerto Rico, Mayagüez, Puerto Rico.

15 WENIGER B, SAVARY H, DAGUIHL R, 1984
Tri phytochimique de plantes de la liste TRAMIL. Laboratoire de chimie des substances naturelles, Faculté de médecine et de pharmacie, Université d'Etat d'Haïti, Port au Prince, Haïti.

16 HERRERA J, 1990
Determinación de actividades biológicas de vegetales utilizados en medicina tradicional. Informe TRAMIL. Dep. de Farmacología, Facultad de Salud, Universidad del Valle, Cali, Colombia.

17 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986
Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press. p110.

18 YASUDA M, IWAMOTO M, OKABE H, YAMAUCHI T, 1984
Structures of momordicines I, II and III, the bitter principles in the leaves and vines of Momordica charantia. Chem Pharm Bull 32(5):2044-2047.

19 DHALLA NS, GUPTA KC, SASTRY MS, MALHOTRA CL, 1961
Chemical composition of the fruit of Momordica charantia. Indian J Pharmacy 23:128-130.

20 KANNA B, 1976
Insulin from Momordica charantia. Patent-Japan Kokai.

21 NG TB, YEUNG HW, 1984
Bioactive constituents of Cucurbitaceae plants with special emphasis on Momordica charantia and Trichosanthes kirilowii. Seoul, Korea: Proc. 5^th. Symposium Medicinal Plants and Spices.

22 KHANNA P, MOHAN S, 1973
Isolation and identification of diosgenin and sterols from fruits and in vitro cultures of Momordica charantia. Indian J Exp Biol 11:58-60.

23 OKABE H, MIYAHARA K, YAMAGUCHI T, MIYAHARA K, KAWASAKI T, 1980
Studies on the constituents of Momordica charantia L. I: Isolation and characterization of momordicosides A and B, glycosides of a pentahydroxy-cucurbitane triterpene. Chem Pharm Bull 28(9):2753-2762.

24 RODRIGUEZ DB, RAYMUNDO LC, TUNG-CHING LEE, SIMPSON KL, CHICHESTER CO, 1976
Carotenoid pigment changes in ripening Momordica charantia fruits. Ann Bot (London) 40(3):615-624.

25 CACERES A, JAUREGUI E, HERRERA D, LOGEMANN H, 1991
Plants used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal infections. 1: Screening of 38 plant extracts for anticandidal activity. J Ethnopharmacol 33(3):277-283.

26 HEAL R, ROGERS E, WALLACE RT, STARNES O, 1950
A survey of plants for insecticidal activity. Lloydia 13(2):89-162.

27 HUSSAIN HSN, DEENI YY, 1991
Plants in Kano ethnomedicine; screening for antimicrobial activity and alkaloids. Int J Pharmacol 29(1):51-56.

28 MANEELRT S, SATTHAMPONGSA A, 1978
Antimicrobial activity of Momordica charantia. Undergraduate special project report. Bangkok, Thailand: Mahidol University. Faculty of Pharmacy.

29 MOKKHASMIT M, SAWASDIMONGKOL K, SATRAWAHA P, 1971
Study on toxicity of Thai medicinal plants. Bull Dept Med Sci 12(1/2):36-65.

30 GONZALEZ A, ALFONSO H, 1990
Evaluación de la toxicidad dérmica de Momordica charantia L., Foeniculum vulgare Mill y Cassia occidentalis L. en cobayos. Informe TRAMIL. Centro Nacional de Salud Animal, La Habana, Cuba.

31 GONZALEZ A, ALFONSO H, 1990
Evaluación de la toxicidad dérmica de Momordica charantia L. y Cassia occidentalis L. en conejos. Informe TRAMIL. Centro Nacional de Salud Animal, La Habana, Cuba.

32 LAGARTO A, COURET M, GUERRA I, LOPEZ R, 2008
Toxicidad aguda oral y ensayos de irritación de extractos acuoso e hidroalcohólico de (follaje) Momordica charantia L. Rev Cubana Plant Med [online] 13(3):0-0. Disponible en: http://bvs.sld.cu/revistas/pla/vol13_3_08/pla05308.htm

33 TABORA O, 1986
Estudio de toxicidad aguda en ratones de la fracción hipoglucemiante de Momordica charantia (Cucurbitaceae). Tegucigalpa, Honduras: IV Semana Científica Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH.

34 PRAKASH AO, MATHUR R, 1976
Screening of Indian plants for antifertility activity. Indian J Exp Biol 14(5):623-626.

35 RUIZ AR, DE LA TORRE RA, ALONSO N, VILLAESCUSA A, BETANCOURT J, VIZOSO A, 1996
Screening of medicinal plants for induction of somatic segregation activity in Aspergillus nidulans. J Ethnopharmacol 52(3):123-127.

36 SHARMA VN, SOGANI RK, ARORA RB, 1960
Some observations on hypoglycemic activity of Momordica charantia. Indian J Med Res 48(4):471-477.

37 UCHE-NWACHI EO, MC EWEN C, 2010
Teratogenic effect of the water extract of bitter gourd (Momordica charantia) on the Sprague Dawley rats. African J of Traditional, Complementary and Alternative Medicines 7(1):24-33.

38 DIXIT VP, KHANNA P, BHARGAVA SK, 1978
Effects of Momordica charantia fruit extract on the testicular function of dog. Planta Med 34(3):280-286.

39 KOENTJORO-SOEHADI T, SANTA I, 1982
Perspectives of male contraception with regards to Indonesian traditional drugs. Bali, Indonesia: 2^nd National Congress of Indonesian Society of Andrology.

40 KHAN AH, BURNEY A, 1962
A preliminary study of the hypoglycemic properties of indigenous plants. Pakistan J Med Res 2:100-116.

41 WEST M, SIDRAK G, STREET S, 1971
The anti-growth properties of extracts from Momordica charantia. West Indian Med J 20(1):25-34.

42 NG T, 1988
Effects of momorcharins on ovarian response to gonadotropin induced superovulation in mice. Int J Fertil 33(2):123-128.

43 YEUNG HW, LI WW, FENG Z, BARBIERI L, STIRPE F, 1988
Trichosanthin, alpha-momorcharin and beta-momorcharin: Identity of abortifacient and ribosome-inactivating protein. Int J Peptide Protein Res 31(3):265-268.

Décharge

L'information ici présentée s'adresse, à des fins pédagogiques, au grand public ainsi qu'aux professionnels de santé. Elle n'a pas la prétention de se substituer à quelque règle ou disposition légale que ce soit. Compte tenu du fait que certaines parties de plantes peuvent, le cas échéant, présenter une toxicité, ou avoir des effets nocifs, ou encore provoquer une interaction avec des médicaments, toute personne désireuse d'utiliser ces moyens thérapeutiques ou leurs produits dérivés doit consulter un médecin ou un autre professionnel de santé qualifié. TRAMIL n'est aucunement responsable pour l'utilisation qui pourrait être faite, dans le cadre d'une quelconque décision, action ou omission, de l'information contenue dans cette Pharmacopée.

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