Cinnamomum verum

Nombre científico: Cinnamomum verum J. S. Presl

Sinónimo: Cinnamomum zeylanicum Blume

Familia botánica: LAURACEAE

Nombres vernáculos

(en territorios con usos significativos TRAMIL)

Haití:

kannèl

Santo Domingo:

canela

Dominica:

Ceylon cinnamon
cinnamon

Martinica:

kannèl

Guadalupe:

kannèl

Guayana Francesa:

kannèl

Otros nombres vernáculos

Colombia:

Canela

Cuba:

Canela

Santo Domingo:

Canela

Guadalupe:

Cannelle

Dominica:

Cinnamon
Cinnamon spice

Distribución geográfica

Originaria de Asia tropical, cultivada en las regiones tropicales.

Descripción botánica

Árbol de 8-15 m, la corteza muy aromática. Hojas opuestas y sub-opuestas, de hasta 15 cm, marcadamente trinervadas desde la base hasta cerca del ápice, brillosas en el haz, glabras, aovadas a elíptico-lanceoladas, redondeadas en la base. Flores blanco-amarillentas en panículas laxas. Frutos de 1.7 cm con punta.

Voucher(s)

Slane,528,SLNH
Jiménez,1509,JBSD

diarrea

corteza (astillas), decocción, vía oral¹

vómito

corteza (astillas), decocción, vía oral^2,3

La corteza (astillas) de Cinnamomum verum constituye un condimento de consumo humano relativamente extendido.

Contra diarrea o vómito:

preparar una decocción con 3 gramos de astilla de corteza en 2 tazas (½ litro) de agua, hervir por 10 minutos en recipiente tapado. Dejar enfriar, colar (filtrar) y beber 1 taza 2 veces al día o después de cada episodio diarreico.

La dosis diaria promedio de la corteza para adultos es de 2 a 4 gramos²⁸.

Ninguna preparación debe guardarse por más de 24 horas, ni fuera de refrigeración.

De acuerdo con la información disponible:

El uso para diarrea y vómitos se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL y la información científica publicada.

El uso de este recurso en caso de diarrea debe ser considerado como complementario de la terapia de rehidratación oral.

En caso de que se observe un deterioro del paciente (deshidratación con lengua seca, pliegue de la piel persistente, oliguria o llanto sin lágrimas) debe buscar atención médica inmediata, si la diarrea o el vómito persisten por más de 2 días debe buscar atención médica.

Evitar su ingesta en caso de úlcera gastroduodenal o gastritis, o con antecedentes de alergia a la planta.

En caso de envenenamiento accidental por ingestión de aceite esencial o preparados que lo contiene, se requiere atención médica.

No usar durante el embarazo porque es susceptible de provocar aborto, la lactancia ni en niños menores de 8 años.

No utilizar por más de 3 días consecutivos.

Trabajo TRAMIL¹⁹

El extracto acuoso (decocción) liofilizado, de astillas de corteza, (2 g/kg/día) vía oral, a 10 ratones machos Swiss 5 días por semana (20 administraciones) y observados 7 días después de finalizado el tratamiento, provocó la muerte de un animal 8 días después de la primera administración y presentó síntomas de deshidratación 3 días antes de su deceso. Durante los primeros 11 días del tratamiento se observó en el 90% de los animales, efectos depresores, (disminución de la actividad motora y de la reacción de alarma, piloerección y pérdida de peso corporal). A partir del día 12 los animales se recuperaron y permanecieron sin manifestaciones tóxicas hasta el final del ensayo. A partir del día 8 se estableció una diferencia estadísticamente significativa (p < 0.05) de peso corporal y se mantuvo hasta el final del ensayo (grupo tratado 27.25 ± 0.74 g y el grupo control 31.08 ± 0.44 g). La autopsia macroscópica no evidenció alteraciones internas.

El extracto acuoso de corteza (1%) mostró actividad mutagénica en el modelo Salmonella typhimurium (5-10 picolitros/disco)²⁰.

Los extractos acuosos de corteza obtenidos con agua caliente o por maceración acuosa (50 mg de sólido/disco) in vitro, fueron negativos en el modelo de mutagenicidad con Bacillus subtilis H17 (rec +) y M45 (rec -). La corteza cruda y los residuos sólidos de ambas extracciones acuosas fueron mutagénicos²¹.

Los extractos acuoso y alcohólico de la corteza (50 µg/mL) in vitro, indujeron actividad mitogénica, en cultivo de linfocitos¹¹.

El extracto etanólico de corteza (0.5, 1 y 3 g/kg) vía oral a ratón, no provocó signos evidentes de toxicidad ni muerte. El mismo extracto administrado diariamente durante 90 días (100 mg/kg) indujo disminución del peso del hígado y de los niveles de hemoglobina, aumento del peso de los órganos reproductores y del número y movilidad de los espermatozoides²².

El extracto acuoso de corteza (1%) vía oral a perro, provocó irritación de la mucosa gástrica, el extracto salino (0.66%) no indujo esta reacción²³.

El extracto alcohólico, (40 mg/2/día/4 semanas/persona), vía oral a 11 mujeres y 4 hombres en un ensayo controlado, 7 mujeres y 1 hombre recibieron placebo, el extracto fue bien tolerado y no mostró efecto tóxico, solo 5 personas reportaron efectos segundarios menores²⁴.

Cuatro estudios en humano: (dos ensayos randomizados, un ensayo controlado y un estudio piloto) no mostraron efecto tóxico²⁵.

El contacto reiterado con la corteza puede inducir reacciones alérgicas (dermatitis de contacto)^26,27.

No se dispone de información que documente la seguridad de su uso medicinal en niños, durante el embarazo o la lactancia.

La corteza ha sido ampliamente estudiada y contiene, entre otros componentes aceite esencial (1-4%): cinamaldehído (65-90%), eugenol (4-10%), cariofileno, l-linalol, l-felandreno, p-cimeno, furfural, acetato de eugenol, alcohol cinámico y cinamílico, metil-eugenol, benzaldehído, cinamaldehído, cinamil-acetato; taninos, azúcares, cumarinas, goma, resinas, diterpenos: cinnzeilanina y cinnzeilanol^4,5.

Análisis proximal de 100 g de corteza⁶: calorías: 305; agua: 11.8%; proteínas: 3.1%; grasas: 1.2%; carbohidratos: 80.6%; cenizas: 3.3%; calcio: 470 mg; tiamina: 0.02 mg; riboflavina: 0.07 mg; niacina: 0.7 mg.

El extracto alcohólico de corteza in vitro mostró actividad antihelmíntica contra Ascaris lumbricoides⁷.

El extracto etanólico (80%) de corteza seca vía oral a ratón, en el modelo de analgesia de contorsiones inducidas por ácido acético intraperitoneal mostró efecto antinociceptivo dosis dependiente⁸.

A la corteza se le atribuye actividad antifúngica, antibacteriana^9,10, nematicida^11,12 y anticonvulsiva^13,14.

El aceite esencial, en el modelo experimental de músculo liso de tráquea (DE₅₀ = 41 mg/L) y de íleon aislado de cobayo (DE₅₀ = 12 mg/L), provocó actividad miorrelajante⁵. Al aceite esencial se le atribuye efecto antiviral, carminativo, astringente, antiséptico⁴, antibacteriano, antifúngico¹⁵, anestésico local, estrogénico y relajante de la musculatura lisa^16-18.

Farmacopea

Ed.3

References

1 CHARLES C, 1988
TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica.

2 WENIGER B, ROUZIER M, 1986
Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

3 GERMOSÉN-ROBINEAU L, GERÓNIMO M, AMPARO C, 1984
Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

4 LEUNG A, 1980
Encyclopedia of common natural ingredients used in food, drugs and cosmetics. Hoboken, USA: Wiley Interscience Publication.

5 NAMBA T, KIKUCHI T, MIKAGE M, KADOTA S, KOMATZU K, SHMIZU M, TOMIMORI T, 1987
Studies on the natural medicinal resources from Sri Lanka (1). On anatomical and chemical differences among each grade of Cinnamomi veri cortex. Shoyakugaku Zasshi 41(1):35-42.

6 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986
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8 ATTA AH, ALKOFAHI A, 1998
Anti-nociceptive and antiinflammatory effects of some Jordanian medicinal plant extracts. J Ethnopharmacol 60(2):117-124.

9 SHARMA A, GHANEKAR AS, PADWAL-DESAI SR, NADKARNI GB, 1984
Microbiological status and antifungal properties of irradiated spices. J Agric Food Chem 32(5):1061-1063.

10 GEORGE M, PETALAI K, 1949
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11 NAMBA T, SAWA K, GEWALI MB, HATTORI M, NARUSE Y, KAGAMIMORI S, 1989
Studies on development of immunomodulating drugs (II). Effect of Ayurvedic medicines on blastogenesis of lymphocytes from mice. Shoyakugaku Zasshi 43(3):250-255.

12 KIUCHI F, NAKAMURA N, MIYASHITA N, NISHIZAWA S, TSUDA Y, KONDO K, 1989
Nematocidal activity of some anthelmintic traditional medicines and spices by a new assay method using larvae of Toxocara canis. Shoyakugaku Zasshi 43(4):279-287.

13 SUGAYA E, ISHIGE A, SEKIGUCHI K, IIZUKA S, SUGIMOTO A, YUZURIHARA M, HOSOYA E, 1988
Inhibitory effect of a mixture of herbal drugs TJ-960 (SK) on pentylenetetrazol-induced convulsions in mice. Epilepsy Res 2(5):337-339.

14 SUGAYA E, ISHIGE A, SEKIGUCHI K, IIZUKA S, ITO K, SUGIMOTO A, ABURANDA M, HOSOYA E, 1988
Inhibitory effect of TJ-960 (SK) on pentylenetetrazol-induced EEG power spectrum changes. Epilepsy Res 2(1):27-31.

15 RAHARIVELOMANANA PJ, TERROM GP, BIANCHINI JP, COULANGES P, 1989
Study of the antimicrobial action of various essential oil extracts from Madagascar plants. II. The Lauraceae. Arch Inst Pasteur Madagascar 56(1):261-271.

16 REITER M, BRANDT W, 1985
Relaxant effects of terpenoid on tracheal and ileal smooth muscles of the guinea pig. Arzneim-Forsch 35(1):408-414.

17 SUGAYA E, TSUDA T, SUGAYA E, USAMI M, TAKAMURA K, 1979
Local anaesthetic action of the Chinese medicine Saiko-Keishi-To. Planta Med 37:274-276.

18 HARRIES N, JAMES KC, PUGH WK, 1978
Antifoaming and carminative actions of volatile oil. J Clin Pharmacol 2:171-177.

19 GARCÍA-GONZÁLEZ M, BARBOZA CJ, 2005
Toxicidad aguda dosis repetida, en ratones, del extracto acuoso (decocción) de las astillas de Cinnamomum verum . Informe TRAMIL. PRONAPLAMED. Depto de Fisiología, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

20 SIVASWAMY SN, BALACHANDRAN B, BALANEHRU S, SIVARAMAKRISHNAN VM, 1991
Mutagenic activity of south Indian food items. Indian J Exp Biol 29(8):730-737.

21 UNGSURUNGSIE M, SUTHIENKUL O, PAOVALO C, 1982
Mutagenicity screening of popular Thai species. Food Chem Toxicol 20(5):527-530.

22 SHAH AH, AL-SHARCEF AH, AGEEL AM, QURESHI S, 1998
Toxicity studies on mice of common species: Cinnamomum zeylanicum bark and Piper longum fruits. Plant Foods Hum Nutr 52(3):231-239.

23 SÁNCHEZ-PALOMERA E, 1951
Concept of the mucous barrier and its significance. Gastroenterology 18:269-286.

24 NIR Y, POTASMAN I, STERMER E, TABAK M, NEEMAN I, 2005
Controlled trial of the effect of cinnamon extract on Helicobacter pylori. Helicobacter 5(2):94-97.

25 NATURAL STANDARD MONOGRAPH 2007
Cinnamon (Cinnamomum spp.). www.naturalstandard.com (12jan2012)

26 SEETHARAM K, PASRICHA J, 1987
Condiments and contact dermatitis of the finger-tips. Indian J Dermatol Venereol Leprol 53(6):325-328.

27 STAGER J, WUTHRICH B, JOHANSSON S, 1991
Spice allergy in celery-sensitive patients. Allergy 46(6):475-478.

28 World Health Organization, 1999
Cortex Cinnamomi. WHO monographs on selected medicinal plants. Vol. I.
Geneva, Switzerland: WHO. pp95-104.

Formal descargo

La información presentada es para fines educativos para el público general y los profesionales de la salud. No pretende reemplazar ninguna regulación o disposición legal. Debido a que algunas partes de plantas pueden eventualmente presentar toxicidad, inducir efectos adversos o interacciones con medicamentos, cualquiera que desee usar este recurso o sus productos derivados debería consultar al médico u otro profesional de la salud calificado. TRAMIL no se hace responsable del uso para una decisión, acción u omisión que se haga a partir de la información contenida en esta Farmacopea.

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