Allium sativum

Nom scientifique : Allium sativum L.

Famille : AMARYLLIDACEAE

Noms vernaculaires

(dans les territoires avec usage significatif TRAMIL)

Guadeloupe:

ail
lay

Guatemala:

ajo

République dominicaine:

ajo

Barbade:

garlic

Haïti:

lay

Sainte-Lucie:

lay

Autres noms vernaculaires

Guadeloupe:

Ail
ail

Honduras:

Ajo

Panama:

Ajo

République dominicaine:

Ajo

Vénézuéla:

Ajo

Colombie:

Ajo

Cuba:

ajo

Haïti:

Ajo/lay
Lay

Saint-Vincent-et-les-Grenadines:

Garlic

Antigua-et-Barbuda:

Garlic

Barbade:

Garlic

Martinique:

lay, ail

Distribution géographique

D'origine euroasiatique, cultivée partout dans le monde.

Description botanique

Plante herbacée à bulbes divisés et enveloppés d’une peau blanchâtre. Feuilles planes, de 2-3 cm de largeur. Inflorescence en hampe d’environs 50 cm; ombelle dense; fleurs rosées avec ovaire oblong-ovoïde.

Voucher(s)

Faujour, 14, BAR
Girón, 254, CFEH
Jiménez, 1519, JBSD
Fuentes, 4635, ROIG
Boulogne, TB1&TH2, UAG

stress (mala sangre)

bulbe pilé, application sur le front²

troubles digestifs (maux d'estomac, digestion mauvaise ou lente, gaz)

bulbe, décoction, voie orale^1-7

parasitoses intestinales

bulbe, décoction, voie orale^4,7

douleurs d’oreille

bulbe pilé, cataplasme, en application locale³

candidose

bulbe pilé, bain et friction¹

affections cutanées

bulbe pilé, bain et friction¹

prurit

bulbe pilé, bain et friction¹

nausée

bulbe, décoction, voie orale^1-6,7

fièvre

bulbe pilé, décoction, voie orale³

flatulence

bulbe, décoction, voie orale^1-6,7

maux de dent

bulbe en application locale^1-2

Le bulbe d’Allium sativum constitue un condiment de consommation humaine relativement étendue.

Le bulbe d’ail à des fins médicinales devrait être consommé avec les repas pour éviter d’éventuels problèmes grastro-intestinaux⁶⁸.

Contre fièvre, parasites intestinaux, lourdeurs d’estomac, nausée ou flatulence :
Préparer une décoction avec 1-2,5 gousses (2 à 5 grammes) d’ail frais⁶⁸ ou 0,4-1,2 grammes d’ail en poudre sèche⁶⁸ dans 1 tasse (250 millilitres) d’eau, faire bouillir pendant 10 minutes dans un récipient couvert. Laisser refroidir, filtrer et boire 1 tasse 3 fois par jour.

Contre les affections cutanées, le prurit, la candidose, le mal de dent ou les douleurs d’oreille :
Peler et laver correctement 1-2,5 gousses (2-5 grammes) d’ail frais, les piler et appliquer sur la zone affectée 2 fois par jour.

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

Selon l’information disponible :

L’emploi contre affections cutanées, prurit, candidose, mal de dent, douleur d’oreille est classé REC, basé sur l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité et l’information scientifique publiée.

Toute application locale doit se conformer à de strictes mesures d’hygiène pour empêcher la contamination ou une infection surajoutée.

Si l’état du patient se détériore ou que les affections cutanées, le prurit, la candidose persistent plus de 5 jours chez l'adulte et 3 jours chez l'enfant, ou que le mal de dent plus de 3 jours ou que les douleurs d’oreille persistent pendant plus de 2 jours, consulter un médecin.

Les douleurs d’oreille pouvant être dues à une otite médiane ou interne, il est recommandé de consulter d’abord un médecin. Son emploi est contre-indiqué en présence de sécrétions à l’intérieur de l’oreille et/ou une éventuelle perforation du tympan.

L’emploi contre la fièvre est classé REC sur la base de l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité, de validation et l’information scientifique publiée.

Si l’état du patient se détériore ou que la fièvre persiste pendant plus de 2 jours, consulter un médecin.

Nous ne disposons pas d’un modèle d’expérimentation adéquat pour valider la mala sangre (stress), qui puisse valider cet emploi traditionnel.

L’emploi contre les parasites intestinaux, les lourdeurs d’estomac, les nausées et la flatulence est classé REC sur la base de l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité et l’information scientifique publiée.

L’usage du bulbe peut produire des réactions d’hypersensibilité par voie orale et topique avec des effets anaphylactiques⁸. Il possède un effet anticoagulant et il est conseillé de suspendre son utilisation avant toute chirurgie ou intervention odontologique^8-9. Il peut causer une gastroentérite¹⁰ et provoquer un reflux oesophagique¹⁰.

Son emploi est contre-indiqué en cas d’hyperthyroïdisme¹¹, en cas d’inflammation stomacale aigüe ou chronique ou en cas d’une irritation significative ou d’inflammation d’autres muqueuses¹⁰. Il est également contre indiqué pour les personnes ayant un traitement hypoglycémiant (oral ou insuline)^12-13, anticholestérolémique, antihypertensif^8,10, anticoagulant^8-14, anti-inflammatoire non stéroïdien (ibuprofène, naproxène) et avec des plantes ou complément alimentaire tel que le Ginkgo biloba à cause du risque d’hémorragie⁸.

L’emploi du bulbe interagit avec des médicaments anticholestérolémiques (lovastatine ou autres «statines» inhibiteurs de l’HMGCoA réductase) en accroissant leur effet¹⁴ et en diminuant la concentration plasmatique des antirétroviraux¹³.

Le bulbe par voie orale peut provoquer l’irritation des voies urinaires sur des personnes présentant une sensibilité spécifique¹⁵.

L’efficacité du médicament saquinavir, utilisée dans le traitement du VIH, peut être réduit si l’on consomme de l’ail¹⁶. Son influence sur d’autres médicaments antiviraux comme le ritonavir¹⁷ n’a pas été démontrée ni non plus l’altération des quantités de médicaments métabolisés par le système enzymatique CYP450 du foie¹⁸.

Plusieurs études ont suggéré qu’il peut causer des contractions utérines^8,10.

Ne pas administrer pendant la grossesse car susceptible de causer un avortement, en période d’allaitement ni à des enfants de moins de 3 ans.

Travail TRAMIL⁵⁴
Le bulbe frais épluché pilé, par voie topique (patch avec 0,6 g/6 cm² de peau/4 heures), sur lapin albinos New Zealand (3 mâles), modèle d’irritabilité dermique aigüe de Draize. La zone traitée a été lavée et des lectures d’érythème et d’œdème ont été effectuées au moment de retirer le patch et après 1, 24, 48 et 72 heures. Un indice de 0,55 a été observé, ce qui le range dans la catégorie légèrement irritante.

Travail TRAMIL⁵⁵
L’extrait aqueux (décoction 30%) de bulbe frais non épluché pilé (4,46 mg/mL de solides totaux) par voie orale (2 mL/100 g de poids corporel); au rat, selon le modèle de classes toxiques aigües, n’a pas provoqué la mort ni de signes évidents de toxicité pendant les 14 jours d’observation, et n’a pas mis de changement en évidence lors des études histopathologiques.

L’extrait de bulbe, par voie topique en cataplasme à hautes concentrations peut provoquer une nécrose de la peau⁵⁶ et une activité allergénique⁵⁷. Ce dernier point a aussi été vérifié par l’administration de l’extrait aqueux par voie orale, à des rats et à des humains sensibles⁵⁸.

La DL₅₀ du bulbe par voie orale et sous-cutanée à des rats des deux sexes a été supérieure à 30 mL/kg⁵⁹.

L’extrait de bulbe (2 g/kg/5 fois par semaine/6 mois) par voie orale au rat, n’a pas eu d’effets toxiques évidents⁶⁰.

L’extrait aqueux de bulbe, (100 mg/jour/3 mois) par voie orale au rat mâle et femelle, n’a pas provoqué de changement de poids ni mis en évidence d’altérations anatomopathologiques du foie, du cœur, ni des vésicules séminales du mâle. La numération des globules blancs et rouges n’a pas été modifiée⁶¹.

Le jus de bulbe ajouté à l’eau de boisson (5%) du régime alimentaire du rat n’a provoqué aucun effet toxique évident⁶².

La dose de 350 mg/personne (des deux sexes de 30 à 62 ans) par voie orale 2 fois par jour, n’a pas provoqué de manifestation toxique⁶³.

Une étude clinique en double aveugle, randomisée avec groupe placébo, avec 30 enfants entre 8-18 ans, recevant pendant 8 semaines un extrait, par voie orale, d’ail commercial (Lichtwer Pharma, RFA) en doses de 300 mg 3 fois par jour, n’a pas montré de différences significatives entre les groupes⁶⁴.

Le bulbe cru, par voie orale à 20 patients, a augmenté l’activité fibrinolytique de 72% et le bulbe cuit de 63%, 6 heures après l’administration⁶⁵.

L’extrait aqueux de bulbe a provoqué une activité utérotonique in vitro sur l’utérus de souris gestante⁶⁶.

L’huile essentielle (1 g/kg) par voie orale au lapin, a montré une activité anticoagulante⁶⁷.

On ne dispose pas d’information garantissant l’innocuité de son emploi sur les enfants, ni sur les femmes enceintes ou allaitantes.

Le bulbe contient :

Métabolites secondaires et/ou substances chimiques	Quantité	Réf.	Métabolites secondaires et/ou substances chimiques	Quantité	Réf.
alcaloïdes :		19-22	présence d’aldéhydes : particulièrement acétaldéhyde		22
	acide nicotinique		alcool allylique
	trigonelline	100-890 ppm	benzoïdes :
glucides	27,4%	21-24		acide-p- hydroxybenzoïque	13 ppm
fructanes d’allium			acide vanillique	6 ppm
pectines		flavonoïdes :		22
acide phytique	3000 ppm		apigénine (un citroflavonoïde)	693 ppm
diterpènes : l’acide gibbérellique ou gibbérelline A-3 et A-7		25		myricétine	693 ppm
lipides :				quercitrine	0,08-200 ppm
	acide arachidonique, cérébrosides		19,21,22,26	prostaglandines		21
	acide linoléique	1200-7800 ppm	terpénoïdes : citral, géraniol, linalol
	acide myristique	614 ppm	phloroglucinol		22
	acide oléique	60-1200 ppm	5-butyl-cystéine-sulfoxyde et dérivés (aminoacides sulfurés)		21-22, 29 31
	acide palmitique	400-3600 ppm	glycine	2000-4800 ppm
monoterpènes :		22	alliine (aminoacides sulfurés)	13000 ppm
	β-phellandrène		tryptophane
	α-phellandrène		endolysine	0,096 ppm
phénilpropanoïdes :		muramidase	0,096 ppm
	acide caféique	10-20 ppm	salicylates	1-4 ppm	22
	acide férulique	7-27 ppm	acide salicylique	1 ppm
	acide p-coumarique	2-58 ppm	saponines :		22, 32 33
	acide sinapique (acide hydroxycinnamique)	2 ppm		éruboside et dérivés
β-sitostérol	13-555 ppm	22		éruboside-B	0,5-13 ppm
composés sulfurés :		22,27, 28-30		sativoside et tigonine
	acide 2-propène-1- sulfonitrique		vitamines :		21-22
	ester de l’acide-2- propène-1-sulfonate-2- propényl			acide ascorbique	100-788 ppm
	ajoène et dérivés			biotine	22 ppm
	trisulfure de méthylallyle et dérivés			allithiamine	0-3 ppm
	disulfure de méthylallyle et dérivés			acide pantothénique	2,6-7,5 ppm
	alliine	1500-27800 ppm		niacine	4-17 ppm
	allyle-1-propényl- thiosulfinate			thiamine	0-8 ppm
	cycloalliine et dérivés
	disulfure de diallyle et dérivés	16-643 ppm
	disulfure de diallyle	2-99 ppm
	tétrasulfure de diallyle	119 ppm

Analyse proximale de 100 g du bulbe²¹: calories : 117; eau : 67,8%; protides : 3,5%; lipides : 0,3%; glucides : 27,4%; fibres : 0,7%; cendres : 1%; calcium : 18 mg; phosphore : 88 mg; fer : 1.5 mg; sodium : 18 mg; potassium : 373 mg; carotène : 0 µg; thiamine : 0,24 mg; riboflavine : 0,05 mg; niacine : 0,4 mg; acide ascorbique : 10 mg.

Travail TRAMIL³⁴
L’extrait aqueux (décoction 30%) de bulbe frais pilé, (1 et 5 g de matériel végétal/kg), par voie orale au rat Wistar mâle, 8 animaux/groupe, modèle de fièvre induite par levure de bière (15% dans de l’eau; 1 mL/100 g) par voie sous-cutanée, le témoin a reçu du paracétamol (150 mg/kg p.o.) et chaque animal a été son propre contrôle. Il y a eu une activité antipyrétique statistiquement significative jusqu’à la troisième heure suivant l’administration des deux doses, le paracétamol présenta un effet significatif pendant les 4 h de l’évaluation.

L’extrait aqueux du bulbe a été actif in vitro contre Escherichia coli et Staphylococcus aureus³⁵.

L’extrait aqueux de bulbe frais, in vitro par la méthode de dilution sur plaque d’agar-agar, a inhibé la croissance de Candida albicans et autres Candida sp. ainsi que celle de 35 souches de plusieurs dermatophytes³⁶.

L’extrait hydroalcoolique (50%) de bulbe frais pilé (20 ou 50% poids/volume), en concentrations de 50 et 100 µL/puits, a montré une activité significative in vitro contre Staphylococcus aureus et Escherichia coli³⁷.

L’extrait hydrométhanolique (50%)³⁸ et la teinture éthanolique (10%)⁴¹ du bulbe séché (30 µL/ disque) ont montré une activité contre des microorganismes gram + et gram -. La teinture a aussi été active contre Staphylococcus aureus³⁹.

Le bulbe, in vitro, a montré une activité antifongique sur dermatophytes et levures pathogènes de l’homme⁴⁰, inhibition de Candida albicans⁴¹.

L’extrait aqueux du bulbe, in vitro, sur plaque d’agar-agar, a montré un effet antifongique contre Microsporum gypseum⁴², Trichophyton rubrum (0,5%)⁴³ et Candida albicans (0,8 mg/mL)⁴².

L’extrait hydroalcoolique (50%) de bulbe frais pilé (20 ou 50% poids/volume), en concentrations de 50 et 100 µL/puits, a montré une activité significative in vitro face à Candida albicans, Epidermophyton floccosum et Trichophyton rubrum³⁷.

Le jus du bulbe, appliqué par voie topique sur le lapin, a montré une activité antifongique sur Microsporum canis⁴⁴ et sur les genres Epidermophyton et Trychosporum³⁷.

L’extrait hydroalcoolique (50%) du bulbe séché pilé (20-50% poids/volume), en application topique 2 fois par jour pendant 4 semaines, sur 60 patients par groupe (15-60 ans) des deux sexes, avec diagnostic mycologique (direct et par culture) de dermatophytes, a montré un effet antimycosique significatif, en comparaison avec l’acide salicylique 3% comme témoin⁴⁵.

L’extrait du bulbe (20%) appliqué 2 fois/jour/10 à 20 jours, sur 6 adultes humains affectés par Trichophyton rubrum et T. mentagrophytes a montré un effet antimycosique⁴⁶.

L’huile à base de gousse d’ail pilée, en application locale, est connue comme analgésique otique et la gousse d’ail mordue sur une carie afin de l’obturer, est utilisée pour contrecarrer le mal de dent⁴⁷.

L’extrait aqueux de bulbe, in vitro, mais pas in vivo sur rat, a montré une activité antihelminthique contre des cestodes (Hymenolepis diminuta, H. microstoma, Taenia taeniaeformis) et des trématodes (Fasciola hepatica, Echinostoma caproni)⁴⁸.

La concentration minime létale (CML), in vitro, sur le cestode intestinal adulte Hymenolepis nana adulte de l’extrait cru d’ail en dilutions en série, a été de 1/20⁴⁹.

Le bulbe d’ail, administré sur souris albinos avant et après l’inoculation avec un plathelminthe intestinal Schistosoma mansoni. Après 7 semaines l’autopsie, la parasitologie du foie et de l’iléon et l’ultra-structure des parasites récoltés ont été analysés. Une réduction de la quantité d’œufs, de la quantité de parasites vivants et plusieurs altérations ultra structurelles du tégument incluant interruption, œdème, vésiculations, ulcères et vacuolisation des autres structures ont été observé. Cette étude suggère que A. sativum est un agent utile en tant que prophylactique et thérapeutique contre l’infection de S. mansoni⁵⁰.

L'extrait aqueux (1 g/mL) du bulbe, voie orale (50 mg/kg de poids corporel pendant 2 semaines), à 8 souris Swiss mâles, a présenté une activité antiparasitaire contre Cryptosporidium sp.⁵¹.

Le bulbe cru, (5 mL/100 mL d’eau) par voie orale deux fois par jour pendant trois jours, à 10 enfants infectés par un cestode intestinal Hymenolepis nana et à 26 autres infectés par un protozoaire intestinal Giardia lamblia a été efficace et sans signes de toxicité⁴⁹.

Le bulbe administré par voie orale (0.64 g/personne) 2 fois/jour/2 semaines, à 29 patients présentant des lourdeurs d’estomac, flatulence et nausées, a montré un effet carminatif⁵².

L’allicine a montré une activité antiparasitaire contre la plupart des parasites intestinaux humains tels que Entamoeba histolytica, Ascaris lumbricoides et Giardia lamblia⁵³.

Pharmacopée

Ed.3

References

1 WENIGER B, ROUZIER M, 1986
Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d’Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

2 GERMOSÉN-ROBINEAU L, GERÓNIMO M, AMPARO C, 1984
Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

3 GIRÓN L, 1988
Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

4 WENIGER B, 1987-88
Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

5 JEAN-PIERRE L, 1988
TRAMIL survey. St. Lucia National Herbarium, Castries, St Lucia.

6 FAUJOUR A, MURREY D, CHELTENHAM-CORBIN B, CARRINGTON S, 2003
TRAMIL survey. enda-caribbean, IICA & UAG, Saint Thomas, Barbados.

7 BOULOGNE I, 2008
Enquête TRAMIL, Les Saintes, UAG, Guadeloupe (FWI).

8 NATURAL STANDARD, 2010
Garlic (Allium sativum L.). Foods, Herbs & Supplements. www.naturalstandard.com/monographs/herbssupplements/garlic. Last updated 5/17/2010.

9 GRUENWALD J, BRENDLER T, JAENICKE C, 2004
Physicians’ Desk Reference for Herbal Medicines, Third Edition. Montvale, NJ, USA: Thomson Healthcare, Inc. 988pp.

10 BRINKER FND, 2001
Herb contraindications and drug interactions. 3° edition. Sandy, Oregon, USA: Eclectic Medical Publications.

11 ARTECHI A (Ed.), 1998
Fitoterapia Vademécum de prescripción de Plantas Medicinales. Barcelona, España: Masson. p63.

12 ALONSO JR, 1998
Tratado de fitomedicina. Bases clínicas et farmacológicas. Buenos Aires, Argentina: Ed. ISIS S.R.L. p208.

13 QUILEZ AM, GARCÍA D, SÁENZ T, 2009
Uso racional de medicamentos a base de plantas. Guía de interacciones entre fitomedicamentos et fármacos de síntesis. Sevilla, España: 1a Edición Fundación Farmacéutica Avenzoar.

14 MEDLINE PLUS, 2009
Ajo (Allium sativum L.). Biblioteca Nacional de Medecina de EE.UU et los Institutos Nacionales de la Salud. URL: www.nlm.nih.gov/medlineplus/spanish/druginfo/natural/patient-garlic.htm….

15 CAPORASO N, SMITH S, ENG R, 1983
Antifungal activity in human urine and serum after ingestion of garlic. Antimicob Agents Chemother 23(5):700-702.

16 PISCITELLI SC, BURSTEIN AH, WELDEN N, GALLICANO KD, FALLOON J, 2002
The effect of garlic supplements on the pharmacokinetics of saquinavir. Clinical infectious diseases 34(2):234-238.

17 GALLICANO K, FOSTER B, CHOUDHRI S, 2003
Effect of short-term administration of garlic supplements on single-dose ritonavir pharmacokinetics in healthy volunteers. British J of Clinical Pharmacology 55(2):199-202.

18 MARKOWITZ JS, DEVANE CL, CHAVIN KD, TAYLOR RM, RUAN Y, DONOVAN JL, 2003
Effects of garlic (Allium sativum L.) supplementation on cytochrome P450 2D6 and 3A4 activity in healthy volunteers. Clin Pharmacol Ther 74(2):170-177.

19 AL-NAGDY SA, ABDEL-RAHMAN MO, HEIBA HI, 1988
Evidence for some prostaglandins in Allium sativum extracts. Phytother Res 2:4196-4197.

20 ROLLERI F, 1943
Occurrence of nicotinic acid and nicotinamide in curative plants. Arch Pharm (Weinheim) 281:118.

21 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986
Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Ratón, USA: CRC Press. p13.

22 DR. DUKE’S PHYTOCHEMICAL AND ETHNOBOTANICAL DATABASES, 2009
www.ars-grin.gov/duke/

23 KOCH HP, JAGER W, GROH U, HOVIE JE, PLANK G, SEDLAK U, PRAZNIK W, 1993
Carbohydrates from garlic bulbs (Allium sativum L.) as inhibitors of adenosine deaminase enzyme activity. Phytother Res 7(5):387-389.

24 BAUMGARTNER S, DAX TG, PRAZNIK W, FALK H, 2000
Characterisation of the high-molecular weight fructan isolated from garlic (Allium sativum L.). Carbohydr Res 328(2):177-183.

25 RAKHIMBAEV IR, OL’SHANSKAYA RV, 1981
Preliminary identification of natural gibberellins of garlic. Izv Akad Nauk Kaz Ssr Ser Biol 2:17-22.

26 INAGAKI M, HARADA Y, YAMADA K, ISOBE R, HIGUCHI R, MATSUURA H, ITAKURA Y, 1998
Isolation and structure determination of cerebrosides from garlic, the bulbs of Allium sativum L. Chem Pharm Bull 46(7):1153-1156.

27 SENDL A, ELBL G, STEINKE B, REDL K, BREU W, WAGNER H, 1992
Comparative pharmacological investigations of Allium ursinum and Allium sativum. Planta Med 58(1):1-7.

28 MOCHIZUKI E, YAMAMOTO T, KOMIYAMA Y, NAKAZAWA H, 1998
Identification of Allium products using flame photometric detection gas chromatography and distribution patterns of volatile sulfur compounds. J Agr Food Chem 46(12):5170-5176.

29 UEDA Y, SAKAGUCHI M, HIRAYAMA K, MIYAJIMA R, KIMIZUKA A, 1990
Characteristic flavor constituents in water extract of garlic. Agr Biol Chem 54(1):163-169.

30 LAWSON LD, WOOD SG, HUGHES BG, 1991
hplc analysis of allicin and other thiosulfinates in garlic clove homogenates. Planta Med 57(3):263-270.

31 MUTSCH-ECKNER M, ERDELMEIER CAJ, STICHER O, REUTER HD, 1993
A novel amino acid glycoside and three amino acids from Allium sativum. J Nat Prod 56(6):864-869.

32 PENG JP, CHEN H, QIAO YQ, MA LR, NARUI T, SUZUKI H, OKUYAMA T, KOBAYASHI H, 1996
Two new steroidal saponins from Allium sativum and their inhibitory effects on blood coagulability. Yao Hsueh Hsueh Pao 31(8):607-612.

33 MATSUURA H, USHIROGUCHI T, ITAKURA Y, FUWA T, 1989
Further studies on steroidal glycosides from bulbs, roots and leaves of Allium sativum L. Chem Pharm Bull 37(10):2741-2743.

34 VICTORIA MdC, MORÓN FJ, MARTÍNEZ I, BRITO G, FUENTES V, 2011
Efecto antipirético de la decocción 30% de bulbo fresco machacado de Allium sativum (ajo) en ratas. Informe TRAMIL. Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, Laboratorio Central de Farmacología, La Habana, Cuba.

35 SHARMA V, SETHI M, KUMAR A, RAROTRA JR, 1977
Antibacterial property of Allium sativum in vivo & in vitro studies. Indian J Exp Biol 15:466.

36 SHAMS M, SHOKOOHAMIRI MR, AMIRRAJAB N, MOGHADASI B, GHAJARI A, ZEINI F, SADEGHI G, RAZZAGHI M, 2006
In vitro antifungal activities of Allium cepa, Allium sativum and ketoconazole against some pathogenic yeasts and dermatophytes. Fitoterapia 77:321-323.

37 MOLINA NM, 1992
Actividad antimicrobiana de extractos de Allium sativum. Evaluación preclínica, farmacológica et toxicológica (Tesis de graduación). Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

38 EL-TANBOULY ND, ABDEL-MEGID RM, 1994
HPLC determination of alliin in garlic and garlic products and their antimicrobal activity. Zagazig J Pharm Sci 3(3A):120-124.

39 CÁCERES A, GIRÓN LM, ALVARADO SR, TORRES MF, 1987
Screening of antimicrobial activity of plants popularly used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal diseases. J Ethnopharmacol 20(3):223-237.

40 KABELIK J, 1970
Antimicrobial properties of garlic. Pharmazie 25(4):266-270.

41 ADETUMBI M, JAVOR GT, LAU BH, 1986
Allium sativum (garlic) inhibits lipid synthesis by Candida albicans. Antimicrob Agents Chemother 30(3):499-501.

42 APPLETON JA, TANSEY MR, 1975
Inhibition of growth of zoopathogenic fungi by garlic extract. Mycologia 67:882-885.

43 PLODDEE A, PALAKORNKOL R, 1977
Antifungal activity of garlic. Undergraduate Special Project Report 1977:23.

44 DELAHA EC, GARAGUSI VF, 1985
Inhibition of mycobacteria by garlic extract (Allium sativum ). Antimicrob Agents Chemother 27(4):485-486.

45 FERNÁNDEZ EJ, 1995
Efecto de dos formulaciones hidroalcohólicas de Allium sativum en el tratamiento de patients con dermatofitosis (Tesis de especialidad en farmacología). Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

46 PRASAD G, SHARMA VD, RAO VN, KUMAR A, 1983
Efficacy of garlic (Allium sativum) treatment against dermatophytosis in man and animals. Indian Vet Med J 7(3):161-163.

47 MARTÍNEZ CROVETTO R, 1981
Plantas utilizadas en medicina en el Noroeste de Corrientes. Miscelanea (Fund Miguel Lillo) 69:7-139.

48 ABDEL-GHAFFAR F, SEMMLER M, AL-RASHEID KA, STRASSEN B, FISCHER K, AKSU G, KLIMPEL S, MEHLHORN H, 2011
The effects of different plant extracts on intestinal cestodes and on trematodes. Parasitol Res 108(4):979-984.

49 SOFFAR SA, MOKHTAR GM, 1991
Evaluation of the antiparasitic effect of aqueous garlic (Allium sativum) extract in Hymenolepiasis nana and giardiasis. J Egypt Soc Parasitol 21(2):497-502.

50 NAHED HA, HODA AT, YOMNA IM, 2009
Effects of garlic on albino mice experimentally infected with Schistosoma mansoni: a parasitological and ultrastructural study. Trop Biomed 26(1):40-50.

51 GAAFAR MR, 2012
Efficacy of Allium sativum (garlic) against experimental cryptosporidiosis, Alexandria J of Medicine 48:59–66.

52 DAMRAU F, FERGUSON E, 1949
The modus vivendi of carminative. The therapeutic value of garlic in functional gastrointestinal disorders. Rev Med J 2:757-758.

53 DEBLASI V, DEBROT S, MENOUD A, GENDRE L, SCHOWING J, 1990
Amoebicidal effect of essential oils in vitro. J Toxicol Clin Exp 10:361-373.

54 MARTÍNEZ MJ, MOREJÓN Z, LÓPEZ M, BOUCOURT E, FUENTES V, MORÓN F, 2005
Irritabilidad dérmica primaria de bulbo fresco machacado de Allium sativum L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, Cerro, C. Habana, Cuba.

55 MARTÍNEZ MJ, MOREJÓN Z, LÓPEZ M, BOUCOURT E, FUENTES V, MORÓN F, 2005
Clases tóxicas agudas (CTA) de una decocción de bulbo de Allium sativum L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

56 GARNIER G, BEZANGER-BEAUQUESNE L, 1961
Ressources médicinales de la flore française. Paris, France: Ed. Vigot Frères.

57 BOJS G, SVENSSON A, 1988
Contact allergy to garlic used for wound healing. Contact Derm 18(3):179-181.

58 PAPAGEORGION C, CORBET JP, BRANDAO FM, PECEGUEIRO M, BENEZIA C, 1983.
Allergic contact dermatitis to Garlic (Allium sativum L.). Identification of the allergens: the role of mono-di and trisulfides present in garlic. A comparative study in man and animal (guinea pig). Arch Dermatol Res 275(4):229-234.

59 KANEZAWA A, NAKAGAWA S, SUMIYOSHI H, MASAMOTO K, HARADA H, NAKAGAMI S, DATE S, YOKOTA A, NISHIKAWA M, FUWA T, 1984
General toxicity tests of garlic extract preparation contained vitamins (Kyoleopin). Pharmacometrics 27(5):909-929.

60 SUMIYOSHI H, KANEZAWA A, MASAMOTO K, HARADA H, NAKAGAMI S, YOKOTA A, NISHIKAWA M, NAKAGAWA S, 1984
Chronic toxicity test of garlic extract in rats. J Toxicol Sci 9(1):61-75.

61 AL-BEKAIRI AM, SHAH AH, QURESHI S, 1990
Effect of Allium sativum on epididymal spermatozoa, estradiol-treated mice and general toxicity. J Ethnopharmacol 29(2):117-125.

62 HUH K, PARK JM, LEE S-IL, 1985
Effect of garlic on the therapeutic glutathione S-transferase and glutathione peroxidase activity in rat. Arch Pharm Res 8(4):197-203.

63 SITPRIJA S, PLENGVIDHYA C, KANGKAYA V, BHUVAPANICH S, TUNKAYOON M, 1987
Garlic and diabetes mellitus phase III clinical trial. J Med Assoc 70(2):223-227.

64 MC CRINDLE BW, HELDEN E, CONNER WT, 1998
Garlic extract therapy in children with hypercholesterolemia. Arch Pediatr Adolesc Med 152(11):1089-1094.

65 CHUTANI SK, BORDIA A, 1981
The effect of fried versus raw garlic on fibrinolytic activity in man. Therosclerosis 38:417-421.

66 SHARAF A, 1969
Food plant as a possible factor in fertility contrôle. Qual Plant MaterVeg 17:153.

67 CHAUHAN LS, GARG J, BEDI HK, GUPTA RC, BOMB BS, AGARWAL MP, 1982
Effect of onion, garlic and clofibrate on coagulation and fibrinolytic activity of blood in cholesterol fed rabbits. Indian Med J 76(10):126-127.

68 WHO, 2004
Allium sativum. WHO Monographs on selected medicinal plants. Volume 1. Bulbis Alii Sativi. Ginebra, Suiza, Oct.28,2004. URL: www.who.int/medicines/library/trm/medicinalplants/monograph_volume_one…

Décharge

L'information ici présentée s'adresse, à des fins pédagogiques, au grand public ainsi qu'aux professionnels de santé. Elle n'a pas la prétention de se substituer à quelque règle ou disposition légale que ce soit. Compte tenu du fait que certaines parties de plantes peuvent, le cas échéant, présenter une toxicité, ou avoir des effets nocifs, ou encore provoquer une interaction avec des médicaments, toute personne désireuse d'utiliser ces moyens thérapeutiques ou leurs produits dérivés doit consulter un médecin ou un autre professionnel de santé qualifié. TRAMIL n'est aucunement responsable pour l'utilisation qui pourrait être faite, dans le cadre d'une quelconque décision, action ou omission, de l'information contenue dans cette Pharmacopée.

Main navigation

TRAMILothèque

Allium sativum

Noms vernaculaires

Guadeloupe:

Guatemala:

République dominicaine:

Barbade:

Haïti:

Sainte-Lucie:

Guadeloupe:

Honduras:

Panama:

République dominicaine:

Vénézuéla:

Colombie:

Cuba:

Haïti:

Saint-Vincent-et-les-Grenadines:

Antigua-et-Barbuda:

Barbade:

Martinique:

Distribution géographique

Description botanique

Voucher(s)

Pharmacopée

References

Décharge